Abstract
Ci sono quattro principali bersagli proteici con cui i farmaci possono interagire: enzimi (per esempio neostigmina e acetilcolinesterasi), trasportatori di membrana (per esempio antidepressivi triciclici e assorbimento della catecolamina-1), canali ionici (per esempio nimodipina e canali Ca2+ legati alla tensione) e recettori. Questo articolo riguarda il recettore e descrive le dinamiche di interazione farmaco-recettore, agonisti, antagonisti, agonisti parziali e agonisti inversi, efficacia e potenza. Le definizioni chiave sono riportate nella tabella 1.
Punti chiave
I canali ionici legati ai ligandi e i recettori accoppiati alle proteine G sono importanti in anestesia.
Gonisti si legano ai recettori per produrre una risposta funzionale.
Gonisti possono essere completi, parziali o inversi.
Antagonisti invertono gli effetti degli agonisti.
Gli antagonisti possono essere competitivi o non competitivi.
Ricettori
Un recettore può essere definito vagamente come “una molecola che riconosce specificamente una seconda piccola molecola il cui legame porta alla regolazione di un processo cellulare… nello stato non legato un recettore è funzionalmente silenzioso”. Questa definizione afferma che un recettore lega specificamente un particolare ligando (ad esempio la bombesina si lega ai recettori della bombesina e non ai recettori vanilloidi), ma in realtà la selettività è una definizione più accurata poiché in alcuni casi alte concentrazioni di ligandi si legano a più tipi di recettori. L’avvertimento che nello stato non legato un recettore è silenzioso è vero nella maggior parte dei casi (in particolare quelli incontrati con gli attuali recettori farmacologici clinicamente utili) ma un’eccezione può essere usata per spiegare l’agonismo inverso.
I recettori possono essere suddivisi in quattro classi principali: canali ionici ligando-gated, tirosin-chinasi-accoppiati, steroidi intracellulari e G-protein-coupled (GPCR). Le caratteristiche di base di questi recettori insieme ad alcuni farmaci che interagiscono con ogni tipo sono mostrati nella tabella 2.
Definizioni chiave
KD . | La costante di dissociazione di equilibrio rappresenta la concentrazione del radioligando che occupa la metà della popolazione massima del recettore. KD è una misura di affinità. |
---|---|
Bmax | Il numero totale di recettori in un particolare tessuto |
Potenza | Crudelmente definito come la gamma di dosi in cui viene prodotta una risposta |
ED50 | La dose di farmaco che produce la metà della risposta massima ed è una semplice misura della potenza |
Efficacia | Definizione grossolanamente come la dimensione o la forza di una risposta prodotta da un particolare agonista in un tessuto particolare |
Emax | Risposta massima che un particolare agonista può produrre in un particolare tessuto ed è una misura grezza dell’efficacia |
KD . | La costante di dissociazione di equilibrio rappresenta la concentrazione del radioligando che occupa la metà della popolazione massima del recettore. KD è una misura di affinità. | |
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Bmax | Il numero totale di recettori in un tessuto particolare | |
Potenza | Definizione grezza come l’intervallo di dose su che una risposta è prodotta | |
ED50 | La dose di farmaco che produce la metà della risposta massima ed è una semplice misura della potenza | |
Efficacia | Definizione approssimativa come la dimensione o forza di una risposta prodotta da un particolare agonista in un particolare tessuto | |
Emax | Risposta massima che un particolare agonista può produrre in un particolare tessuto ed è una misura grezza di efficacia |
Definizioni chiave
KD . | La costante di dissociazione di equilibrio rappresenta la concentrazione del radioligando che occupa la metà della popolazione massima del recettore. KD è una misura di affinità. |
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Bmax | Il numero totale di recettori in un tessuto particolare |
Potenza | Crudelmente definito come la gamma di dosi in cui viene prodotta una risposta |
ED50 | La dose di farmaco che produce la metà della risposta massima ed è una semplice misura di potenza |
Efficacia | Definizione grossolanamente come la dimensione o la forza di una risposta prodotta da un particolare agonista in un tessuto particolare |
Emax | Risposta massima che un particolare agonista può produrre in un particolare tessuto ed è una misura grezza dell’efficacia |
KD . | La costante di dissociazione di equilibrio rappresenta la concentrazione del radioligando che occupa la metà della popolazione massima del recettore. KD è una misura di affinità. | |
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Bmax | Il numero totale di recettori in un tessuto particolare | |
Potenza | Definizione grezza come la gamma di dosi in cui una risposta è prodotta | |
ED50 | La dose di farmaco che produce la metà della risposta massima ed è una semplice misura della potenza | |
Efficacia | Definizione approssimativa come la dimensione o la forza di una risposta prodotta da un particolare agonista in un particolare tessuto | |
Emax | Risposta massima che un particolare agonista può produrre in un particolare tessuto ed è una misura grezza di efficacia |
Caratteristiche di base caratteristiche del recettore
. | LGIC . | TRK . | Steroide . | GPCR . | |
---|---|---|---|---|---|
Luogo | Membrana | Membrana | Intracellulare | Membrana | |
Azione principale | Flusso ionico | Fosforilazione | Trascrizione genica | Secondi messaggeri | |
Esempio/farmaco | Nicotinico/NMBD | Insulina/insulina | Steroide/tiroxina | Opioide/morfina | |
NMDA/ketamina | Fattore di crescita/EGF | Steroide/estrogeno | Adrenocettore/isoprenalina |
. | LGIC . | TRK . | Steroide . | GPCR . | |
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Luogo | Membrana | Membrana | Intracellulare | Membrana | |
Azione principale | Flusso ionico | Fosforilazione | Trascrizione genica | Secondi messaggeri | |
Esempio/farmaco | Nicotinic/NMBD | Insulina/insulina | Steroide/tiroxina | Opioide/morfina | |
NMDA/ketamina | Fattore di crescita/EGF | Steroidi/estrogeni | Adrenocettore/isoprenalina |
LGIC = ligando-gated ion channel; TRK = tirosin-chinasi accoppiata; GPCR = recettore accoppiato a proteine G; NMBD = farmaci bloccanti neuromuscolari; NMDA = N-metil-d-aspartato; EGF = fattore di crescita epidermico.
Caratteristiche di base del recettore
. | LGIC . | TRK . | Steroide . | GPCR . | |
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Luogo | Membrana | Membrana | Intracellulare | Membrana | |
Azione principale | Flusso ionico | Fosforilazione | Trascrizione genica | Secondi messaggeri | |
Esempio/farmaco | Nicotinico/NMBD | Insulina/insulina | Steroide/tiroxina | Opioide/morfina | |
NMDA/ketamina | Fattore di crescita/EGF | Steroide/estrogeno | Adrenocettore/isoprenalina |
. | LGIC . | TRK . | Steroide . | GPCR . | |
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Luogo | Membrana | Membrana | Intracellulare | Membrana | |
Azione principale | Flusso ionico | Fosforilazione | Trascrizione genica | Secondi messaggeri | |
Esempio/farmaco | Nicotinic/NMBD | Insulina/insulina | Steroide/tiroxina | Opioide/morfina | |
NMDA/ketamina | Fattore di crescita/EGF | Steroidi/estrogeni | Adrenocettore/isoprenalina |
LGIC = ligando-gated ion channel; TRK = tirosin-chinasi accoppiata; GPCR = recettore accoppiato a proteine G; NMBD = farmaci bloccanti neuromuscolari; NMDA = N-metil-d-aspartato; EGF = fattore di crescita epidermico.
Il recettore nicotinico dell’acetilcolina dovrebbe essere un membro familiare della famiglia dei canali ionici ligando-gated per tutti gli anestesisti in quanto questo è il sito d’azione degli agenti bloccanti neuromuscolari. Il recettore (come è caratteristico di questa famiglia) è composto da più subunità che si uniscono per formare un poro acquoso attraverso il quale scorrono (non solo) gli ioni Na+. Il legame dell’acetilcolina apre il poro permettendo l’afflusso di Na+ per produrre una depolarizzazione. Altri esempi di questa famiglia includono il recettore GABAA (un bersaglio importante per l’azione anestetica) la cui attivazione permette l’afflusso di Cl- per produrre l’iperpolarizzazione della membrana e la riduzione della trasmissione centrale.
I recettori tirosin-chinasi-accoppiati e gli steroidi hanno poca rilevanza anestetica diretta e non saranno considerati ulteriormente in questo articolo. Gli steroidi anestetici (per esempio l’alfaxalone) non producono anestesia attraverso il recettore steroideo; essi potenziano le azioni del GABAA sul recettore GABAA. I GPCR sono una classe importante che comprende alcuni dei principali sistemi usati/manipolati clinicamente in ambito anestetico. Questi includono i recettori adrenergici, muscarinici e oppioidi. L’attivazione di un GPCR permette l’interazione con una proteina G, che è composta da subunità α, β e γ. Le subunità Gα attivate interagiscono poi con una molecola effettrice per produrre un secondo messaggero, che provoca una risposta cellulare (Tabella 3). Le subunità Gα attivate possono anche interagire con i canali ionici per modulare la conduttanza ionica.
Alcuni esempi di interazione recettore-proteina (non esaustiva)
Receptor . | Proteina G . | Effettore/ secondo messaggero(i) . | Risposta . | |
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Opioide/α2-adrenergico | Gi | Adenylyl cyclase, ↓cAMP, VSCC, ↓Ca2+, Kir, K+ | Ridotto NT | |
β1-Adrenergico | Gs | Adenylyl cyclase, cAMP | Contrazione cardiaca | |
α1-Adrenergico | Gq | Fosfolipasi C, IP3/DAG | Contrazione vascolare |
Receptor . | G-proteina . | Effettore/ secondo messaggero(i) . | Risposta . | |
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Opioide/α2-adrenergico | Gi | Adenylyl cyclase, ↓cAMP, VSCC, ↓Ca2+, Kir, K+ | Ridotto NT | |
β1-Adrenergico | Gs | Adenylyl cyclase, cAMP | Contrazione cardiaca | |
α1-Adrenergico | Gq | Fosfolipasi C, IP3/DAG | Contrazione vascolare |
NT = neurotrasmissione; VSCC = canali Ca2+ sensibili al voltaggio; Kir = canale K+ rettificante all’interno; IP3 = inositolo(1,4,5)trifosfato; DAG = diacilglicerolo.
Alcuni esempi di interazione recettore-G-proteina (non esaustiva)
Ricettore . | Proteina G . | Effettore/ secondo messaggero(i) . | Risposta . | |
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Opioide/α2-adrenergico | Gi | Adenylyl cyclase, ↓cAMP, VSCC, ↓Ca2+, Kir, K+ | Ridotto NT | |
β1-Adrenergico | Gs | Adenylyl cyclase, cAMP | Contrazione cardiaca | |
α1-Adrenergico | Gq | Fosfolipasi C, IP3/DAG | Contrazione vascolare |
Receptor . | G-proteina . | Effettore/ secondo messaggero(i) . | Risposta . | |
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Opioide/α2-adrenergico | Gi | Adenylyl cyclase, ↓cAMP, VSCC, ↓Ca2+, Kir, K+ | Ridotto NT | |
β1-Adrenergico | Gs | Adenylyl cyclase, cAMP | Contrazione cardiaca | |
α1-Adrenergico | Gq | Fosfolipasi C, IP3/DAG | Contrazione vascolare |
NT = neurotrasmissione; VSCC = canali Ca2+ sensibili al voltaggio; Kir = canale K+ rettificante all’interno; IP3 = inositolo(1,4,5)trifosfato; DAG = diacilglicerolo.
Interazione farmaco-recettore
Come notato sopra, l’interazione farmaco-recettore può essere generalmente definita come specifica, legata alla dose e saturabile. Queste caratteristiche di un farmaco ad un recettore sono descritte da KD e ED50 e possono essere ottenute dal legame del ligando e dalle curve dose-risposta.
La costante di dissociazione di equilibrio KD
La costante di dissociazione di equilibrio KD è vagamente definita come la concentrazione di un radioligando che occupa la metà di una particolare popolazione di recettori. La concentrazione usata qui è la concentrazione in vitro; clinicamente la massa (dose) di farmaco data a un paziente è più comunemente usata (vedi sotto). KD è determinato sperimentalmente ed è una misura dell’affinità di un farmaco per un recettore. Più semplicemente, la forza dell’interazione ligando-recettore. Per determinare KD, una massa fissa di membrane (con recettore) viene incubata con concentrazioni crescenti di un radioligando fino alla saturazione. Alla saturazione, viene determinata la Bmax (numero massimo di recettori) e la metà di questa viene usata per determinare la KD (Fig. 1). Il legame ad alta affinità si verifica a basse concentrazioni di farmaco; al contrario, il legame a bassa affinità si verifica ad alta concentrazione di farmaco. Se un ligando ha affinità non significa necessariamente che produrrà una risposta. Per esempio, un antagonista che mostra un’alta affinità non produce una risposta di per sé.
Esperimento di legame in saturazione. All’aumentare della concentrazione di radiolabel, la quantità legata aumenta fino alla saturazione (Bmax). A metà Bmax la KD viene estrapolata. Questa iperbole rettangolare è spesso convertita in un grafico semi-logaritmico da cui si possono ottenere stime più accurate. In questo esempio la KD è stimata a 1 nM (1 × 10-9 M) o come una pKD (-log10KD) di 9.
Saturation binding experiment. All’aumentare della concentrazione di radiolabel la quantità legata aumenta fino alla saturazione (Bmax). A metà Bmax la KD viene estrapolata. Questa iperbole rettangolare è spesso convertita in un grafico semi-logaritmico da cui si possono ottenere stime più accurate. In questo esempio la KD è stimata a 1 nM (1 × 10-9 M) o come pKD (-log10KD) di 9.
Agonisti e ED50
Un agonista è un farmaco che si lega a un recettore e produce una risposta funzionale. Gli esempi includono la morfina (recettore μ-opioide) e la clonidina (α2-adrenocettore). La capacità di produrre una risposta è definita efficacia (o attività intrinseca); questa varia con il tipo di risposta misurata. Questo articolo considererà la risposta dell’animale intero il più possibile. L’intervallo di dosi in cui viene prodotta una risposta viene definito potenza. La potenza di un particolare agonista può essere definita dalla curva dose-risposta (Fig. 2) come la dose di farmaco che produce il 50% della risposta massima (ED50); la risposta massima stessa è una misura grezza dell’efficacia.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche degli agonisti. Sono mostrati agonisti parziali completi ed equipotenti e agonisti parziali ad alta potenza. La potenza è l’intervallo di dosi in cui viene prodotta una risposta ed è descritta da ED50. In questo esempio, l’ED50 per l’agonista parziale completo ed equipotente (punto 1 del grafico) è 300 ng e per l’agonista parziale ad alta potenza (punto 2 del grafico) è 10 ng. L’efficacia o la capacità di produrre una risposta per l’agonista parziale è inferiore a quella dell’agonista completo. In questo esempio l’ordine di efficacia è pieno > parziale ad alta potenza > parziale equipotente.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche degli agonisti. Sono mostrati agonisti parziali completi ed equipotenti e agonisti parziali ad alta potenza. La potenza è l’intervallo di dosi in cui viene prodotta una risposta ed è descritta da ED50. In questo esempio, l’ED50 per l’agonista parziale completo ed equipotente (punto 1 del grafico) è 300 ng e per l’agonista parziale ad alta potenza (punto 2 del grafico) è 10 ng. L’efficacia o la capacità di produrre una risposta per l’agonista parziale è inferiore a quella dell’agonista completo. In questo esempio l’ordine di efficacia è pieno > parziale ad alta potenza > parziale equipotente.
È importante ricordare che potenza ed efficacia sono concetti diversi e non possono essere scambiati. Se un agonista ha un’alta efficacia, non significa necessariamente che avrà un’alta potenza e viceversa. Un agonista che produce la massima risposta possibile in quel sistema è definito un agonista completo e tutto ciò che produce una risposta inferiore è un agonista parziale. Questi principi sono illustrati nella figura 2. L’agonista completo è mostrato in quadrati chiusi. In questo esempio, l’efficacia è del 100% e la potenza (ED50) è di 300 ng . Nei cerchi pieni c’è un agonista parziale equipotente (stesso ED50) di minore efficacia (risposta massima ∼40%). Tuttavia, nei cerchi aperti è mostrato un agonista parziale di bassa efficacia e alta potenza (ED50 = 10 ng). Ancora una volta, si noti che in questo esempio, la potenza e l’efficacia non sono intercambiabili.
Come si rapportano la potenza e l’efficacia all’affinità? Come notato in precedenza, solo perché un ligando ha affinità non significa necessariamente che avrà efficacia; per esempio, un semplice antagonista avrà affinità ma un’efficacia pari a zero. Chiaramente, per un agonista la capacità di legarsi a un recettore determinerà la capacità di produrre una risposta e in una certa misura la dimensione di questa risposta. Tuttavia, i due sono raramente collegati in modo lineare e dipendono da quale risposta viene misurata. Pertanto, non si possono dare definizioni definitive. Un’ulteriore e importante caratteristica degli agonisti parziali è che possono invertire gli effetti degli agonisti completi. Per esempio, un ipotetico paziente a cui viene somministrata buprenorfina (μ-agonista parziale) richiederebbe dosi più elevate di morfina per produrre lo stesso grado di analgesia della morfina da sola (cioè la buprenorfina antagonizza gli effetti della morfina sul recettore μ). Tuttavia, quando gli effetti della buprenorfina diminuiscono, l’analgesia indotta dalla morfina e la depressione respiratoria diventano più evidenti.
Relazioni tra l’occupazione del recettore e le riserve del recettore
Se una semplice curva di occupazione del recettore per un agonista completo viene tracciata sugli stessi assi di una curva dose-risposta, la risposta funzionale si trova spesso a sinistra della curva di occupazione. L’implicazione di questo è che a bassa occupazione del recettore una risposta completa può essere prodotta. Spesso accade che solo il 5-10% dell’occupazione è necessario per produrre una risposta completa, il che indica che il ∼90% dei recettori non è necessario per ottenere una risposta massima e quindi costituisce la riserva del recettore. Per un agonista parziale, ricordiamo che la risposta massima è ridotta rispetto all’agonista completo, per cui anche con un’occupazione del 100% non è possibile produrre una risposta completa (simile all’agonista completo). I recettori di riserva non sono raggruppati o nascosti; sono semplicemente in eccesso rispetto alle esigenze.
Antagonisti
Gli antagonisti neutrali bloccano l’effetto di un agonista. Ci sono due tipi di antagonismo: competitivo (reversibile, superabile) e non competitivo (irreversibile, insormontabile). Per esempio, il naloxone è un antagonista competitivo a tutti i recettori oppioidi e la ketamina è un antagonista non competitivo al recettore NMDA-glutammato.
L’azione di un antagonista competitivo può essere superata aumentando la dose dell’agonista (cioè il blocco è superabile). Sia l’agonista che l’antagonista si legano allo stesso sito sul recettore. L’effetto che questo ha sulla curva dose-risposta di un agonista è di spostarla verso destra. Poiché la risposta è superabile, la risposta massima rimane invariata (Fig. 3). Il grado di spostamento verso destra è legato all’affinità dell’antagonista e alla dose utilizzata. Più alta è la dose, più agonista è necessario per superare la risposta. Più alta è l’affinità dell’antagonista, maggiore è lo spostamento (ricordate l’affinità è la forza dell’interazione antagonista-recettore e più agonista è necessario per interrompere questa interazione). Al contrario, se il grado di spostamento è noto, allora l’affinità dell’antagonista può essere stimata.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche degli antagonisti. Un antagonista competitivo sposta la curva dose-risposta dell’agonista verso destra senza alcun cambiamento nella risposta massima apparente ottenuta. L’antagonista non competitivo o irreversibile deprime la risposta massima.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche degli antagonisti. Un antagonista competitivo sposta la curva dose-risposta dell’agonista verso destra senza alcun cambiamento nella risposta massima apparente ottenuta. L’antagonista non competitivo o irreversibile deprime la risposta massima.
Le azioni di un antagonista non competitivo non possono essere superate aumentando la dose di agonista (Fig. 3). Questo perché i siti di legame dell’agonista e dell’antagonista sono diversi; quindi, l’agonista non sposterà la molecola dell’antagonista (per esempio, la ketamina si lega nel poro del canale del recettore NMDA, ma l’agonista, il glutammato, si lega alla superficie extracellulare del recettore). Graficamente, le azioni di un antagonista irreversibile sono le stesse di un antagonista non competitivo ma la spiegazione è diversa; per l’antagonista irreversibile il sito di legame può essere lo stesso dell’agonista ma essendo irreversibile (spesso legato chimicamente) non può essere spostato e quindi non può essere superato.
Agonisti-antagonisti misti
Nel caso di sottotipi di recettori, è possibile che un singolo ligando possa avere proprietà di agonista e antagonista (cioè farmacologia mista). Alcune delle migliori illustrazioni di questo si verificano nei recettori oppioidi di cui ci sono tre sottotipi classici: μ, δ e κ. Per esempio, la pentazocina è un antagonista dei recettori μ e un agonista dei recettori oppioidi δ/κ.
Agonisti inversi
Nella definizione di recettore di cui sopra è stato affermato che “nello stato non legato un recettore è funzionalmente silenzioso” e questo è vero nella maggior parte dei casi. Tuttavia, alcuni sistemi recettoriali mostrano un’attività costitutiva, sia sperimentalmente come risultato di una sovraespressione o come risultato di una mutazione. Questi recettori sono attivi in assenza di agonista. Un agonista inverso inibirebbe questa attività costitutiva e, come tale, si dice che abbia un’efficacia negativa. La figura 4 illustra questo principio in cui sono visualizzati un agonista convenzionale, un antagonista competitivo e un agonista inverso. Le azioni dell’agonista e dell’agonista inverso possono essere invertite da un antagonista competitivo come descritto sopra. Il significato clinico dell’agonismo inverso rimane da esplorare, ma l’agonismo inverso è stato riportato per diversi sistemi, compresi i recettori delle benzodiazepine e dei cannabinoidi.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche di un agonista inverso. In questo esempio è mostrata un’efficacia negativa del ∼50%. Un agonista e un antagonista sono inclusi per il confronto.
Curva dose-risposta che illustra le caratteristiche di un agonista inverso. In questo esempio è mostrata un’efficacia negativa del ∼50%. Un agonista e un antagonista sono inclusi per confronto.
Riferimenti importanti
Aitkenhead AR, Rowbotham DJ, Smith G. Textbook of Anaesthesia, 4th Edn. Londra: Churchill-Livingstone,
Calvey TN, Williams NE. Principles and Practice of Pharmacology for Anaesthetists, 3rd Edn. Oxford: Blackwell Scientific Publications,
Kenakin T. Pharmacologic Analysis of Drug-Receptor Interaction. Filadelfia: Lippincott-Raven,
Rang HP, Dale MM, Ritter JM, Moore PK. Pharmacology, 5th Edn. London: Churchill-Livingstone,